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ELISA 技巧|做ELISA實驗需要注意哪些問題?

發(fā)布時間:2024-09-14     發(fā)布作者:上海通蔚生物

  ELISA實驗操作相對簡單,易于標準化和自動化,不過難免也會出現一些問題。常見問題包括標準曲線不佳、無信號、變異系數(CV)及背景高問題。這些問題將會影響實驗結果的準確性。本文針對這些問題,為大家詳細的介紹。

  目錄

  1)標準曲線不佳

  2)無信號

  3)變異系數(CV)高

  4)背景高

  一、標準曲線不佳


  標準曲線至關重要,因為它可以讓您確定樣品中目標分子的濃度。如果您的標準曲線不正確,可能并不總是很明顯,因此建立對它的信心是第一步。我們強烈建議您在每次進行ELISA時使用或準備質量控制(QC)樣品。理想情況下,這些樣品應涵蓋低、中、高濃度,覆蓋標準曲線的整個范圍。將它們放在ELISA板的左側和右側(第1列和第12列)。這些QC樣品的濃度應與標準曲線上的濃度不同,模擬已知濃度的實際樣品以進行準確性驗證。理想情況下,將QC樣品基質與您的真實樣品(例如血清或血漿)相匹配。還建議提前準備一批QC樣品并將其儲存在-80°C下,就像您的常規(guī)樣品一樣。這樣,您就可以監(jiān)控一段時間內或不同生產批次的檢測性能,前提是您的分析物在您的存儲條件下保持穩(wěn)定。如果您預計未來需要新的QC樣品,請在用完舊批次之前準備好它們,這樣您就可以在測試檢測中同時運行舊批次和新批次,以確保等效性。

  標準曲線常見問題

  標準曲線的常見問題可能包括不同濃度下的光密度(OD)值不一致,導致曲線擬合度較差且R2值較低(理想情況下,R2應>0.99)。



常見問題

解決方案

1.標準溶液不正確:使用錯誤濃度的標準起始溶液可能會導致標準稀釋不足或過度稀釋,從而導致 OD 偏差并使標準曲線超出范圍。

仔細檢查標準儲備液濃度、稀釋計算和稀釋度。如果您要從凍干小瓶中重構標準品,請確保遵循廠家的說明。建議渦旋小瓶以確保完全重構。

2.降解標準:舊的或儲存不當的標準可能已經降解,導致 OD 值低于未降解的標準。

驗證標準是否已正確配制并適當存儲。

3.曲線不符合比例有時,即使您認為曲線繪制正確,您仍可能觀察到比平時更高或更低的 OD 值。這可能是由于檢測試劑批次不同等因素導致吸光度變化。

首次使用特定廠家 ELISA 試劑盒時,請確保使用推薦的曲線擬合模型,通常是 4 5 參數邏輯曲線擬合模型 (4-PL 5-PL)。如有必要,請嘗試其他曲線擬合模型,如對數-對數。一致性是關鍵,因此更改曲線擬合模型可能會導致您的結果在檢測之間無法比較,尤其是在需要絕對值的情況下。

4.移液誤差向板中添加樣品時可能會發(fā)生移液誤差,例如樣品量不正確或變異系數 (CV) 過高。

為了最大限度地減少移液錯誤,請確保移液器吸頭牢固連接,在試劑和樣品之間更換吸頭,消除孔或移液器吸頭中的氣泡,將試劑/樣品分配到孔的側面,并通過連續(xù)的抽吸/分配循環(huán)沖洗吸頭。


  溫馨提示:保留您的試管,直到您分析了結果。保留用于制備標準品、QC樣品和樣品的試管,可以讓您在稍后發(fā)現錯誤時仔細檢查稀釋錯誤或試管混淆。

  二、無信號


  讓我們來探討一下ELISA結果中信號缺失或非常弱的原因和可能的解決方案。由于ELISA中的每個步驟都至關重要,信號缺失的潛在原因有很多,因此故障排除是一個綜合過程。



常見問題

解決方案

1.無樣品信號,但標準品和/QC 樣品良好

1.如果您的標準/校準曲線和/QC樣品顯示信號,但您的樣品沒有(如預期),則您的樣品可能有問題??赡艹霈F以下幾種問題:

2.使用新的樣本基質:并非所有ELISA都適用于所有樣本類型,使用不同樣本類型可能需要咨詢廠家或重新開發(fā)檢測方法。

3.稀釋度過高:樣品過度稀釋超過ELISA的靈敏度可能會導致信號丟失。

4.分析物低于檢測限:樣本中可能含有分析物不足,低于ELISA的檢測限。

5.降解樣本

零信號

有多種潛在原因可導致零信號產生:

1.孵育時間/溫度:驗證孵育時間和溫度是否符合制廠家的說明要求,以避免影響檢測動力學。

2.捕獲/檢測抗體不足/不正確:仔細檢查抗體稀釋度,特別是內部制備的試劑,并確保正確訂購廠家提供的即用型試劑。

3.添加的捕獲/檢測試劑不足:確保向板中添加了正確量的試劑。

4.讀取器波長:確認您的平板讀取器上的波長設置正確,特別是在使用需要視覺停止的底物時。

5.底物溶液:使用正確的底物并檢查儲備溶液的有效期。

6.洗板:避免過度劇烈或長時間洗板,因為這可能會洗掉分析物或試劑。

7.干燥孔:防止孔變干,以避免出現不可預測的ELISA問題。


  三、變異系數(CV)高


  讓我們深入探討ELISA結果中變異系數(CV)較高的可能原因。高CV可能表現為重復孔之間的光密度讀數存在顯著差異,并且可能對板的某些部分產生不同的影響。解決問題取決于確定高CV的具體位置,因為它會影響曲線擬合和結果可靠性。


常見問題

解決方案

移液誤差

雖然通常歸因于移液誤差,但高 CV 也可能由樣品制備、試劑處理和清洗步驟中的錯誤造成。確保稀釋樣品混合正確,以避免重復樣品之間存在差異。

樣品準備

將稀釋樣品加入板中之前,大力混合或用移液器吸出稀釋樣品,以避免分析物分布不一致。

試劑準備

試劑(如捕獲抗體或檢測抗體)混合不當可能會導致不同孔中的試劑水平不同,從而增加 CV。

洗板

確保徹底、一致地洗板,以防止板上殘留基質成分,導致背景信號增加。

孔內氣泡

移液時盡量減少氣泡,因為氣泡會干擾分析物或試劑。讀取板前應消除所有可見氣泡。

邊緣效應

注意邊緣效應,這可能是由于板上的溫度差異造成的??刂茰囟炔⒋_保適當的試劑混合可以緩解此問題。


  四、高背景


  ELISA中的高背景表現為整個板的顏色顯色或光密度讀數過高。高背景會增加信噪比,降低檢測靈敏度并可能導致結果不可用。高背景通常有兩個主要原因:板清洗和板阻塞。但是,我們將在下面更詳細地討論。

  溫馨提示:如果您在一段時間內進行大量相同的ELISA,請將空白(陰性對照)、標準和任何QC樣品孔的光密度制成表格。這可以讓您了解檢測或試劑是否隨時間而變化,從而導致檢測動力學逐漸發(fā)生變化。

常見問題

解決方案

基于抗體的問題

1.包被/檢測抗體濃度:仔細檢查捕獲抗體的稀釋度,特別是如果您從頭開始開發(fā)ELISA。在這種情況下,可能需要優(yōu)化包被條件。

2.非特異性結合:檢查抗體的配方,確保所用的稀釋劑合適,因為不兼容的稀釋劑會導致非特異性結合。充分的板封閉對于減少非特異性結合至關重要。

3.交叉反應性:當使用新新批次、新供應商或新類型的抗體時,請使用陰性對照檢查是否與樣品類型中的其他分析物發(fā)生交叉反應。

試劑(緩沖液或底物)

由于之前的背景較高而重復檢測時,請始終使用新鮮試劑。受污染的緩沖液可能導致背景較高。

基質效應

術語基質效應是指非目標樣品基質成分產生的信號干擾。它是指最終測定讀數中所有樣品成分總和所觀察到的信號增加。某些基質對最終測定信號的影響大于其他基質。請咨詢廠家以獲取有關基于試劑盒的測定的經過驗證的樣品類型的信息,或者如果您自己開發(fā)了新的樣品類型,請針對新樣品類型優(yōu)化您的測定。

通過加標和回收實驗,您可以評估樣品基質對特定測定的影響,這在使用組分試劑而非預格式化試劑盒開發(fā)ELISA時尤為重要。將已知量的分析物添加到樣品基質和用于制備標準的稀釋劑中。然后應使用兩種樣品類型完成ELISA并根據標準曲線計算響應,從而確定測定中的基質效應。

如果觀察到明顯的基質效應,則用與樣品更接近的基質(例如細胞裂解緩沖液或血清)稀釋標準品。

封閉

封閉緩沖液在檢測中至關重要,因為它可以防止非特異性結合。為了降低高背景,請考慮增加封閉溶液的濃度或添加少量非離子洗滌劑,例如Tween-20。延長封閉步驟的孵育時間和使用平板振蕩器也有幫助。

洗板

洗板不充分會導致基質成分殘留在板上,從而導致背景信號增加。清洗步驟或在清洗步驟之間進行短暫孵育可有效降低背景。確保自動洗板機正常運行,并且在更換清洗緩沖液之間管路清潔且沖洗干凈。

基底問題

如果反應未在規(guī)定時間內停止,某些底物(如TMB)可能會沉淀。請遵循制造商的建議,并在加入終止液后立即讀取板。確保檢測板底部清潔,以防止干擾板讀取器。




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